Дифтерия

какая среда для определения токсигенности коринебактерий дифтерии

Цена: по запросу

Вы можете добавить товар в корзину, указав количество

Упаковка: 0,25 кг

Вид упаковки: полиэтиленовая банка

Коринетоксагар — твердая питательная среда для определения токсигенности коринебактерий методом иммунопреципитации в агаре

Функциональное назначение

Определение токсигенных штаммов Corynebacterium diphtheriae в исследуемых образцах бактериологическим посевом на питательную среду в санитарной и клинической микробиологии. Состав среды обеспечивает рост и выработку токсина возбудителем дифтерии. В основе метод встречной иммунодиффузии и образование линий преципитации. Токсигенными считаются штаммы С.diphtheriae, преципитационные линии которых смыкаются или идут на смыкание со специфической линией контрольного штамма. Нетоксигенные штаммы либо совсем не дают преципитатов, либо образуют линии, пересекающиеся со специфической линией контрольного штамма.

Технические характеристики

Компонентный состав, грамм/литр:
Автолизат кильки (РП № 786-98) 19,0;
Агар микробиологический для бактериологических целей (ГОСТ 17206-96) 8,0±0,1;
Сода кальцинированная (ГОСТ 17206-96) 1,0.
Мелкодисперсный водорастворимый порошок. Готовая среда прозрачна светло-желтого цвета.
Форма выпуска: полиэтиленовые банки по 200, 400 г или по 200 г в пакетах из трехслойной ламинированной бумаги.
Порошок хранить герметично закрытым в сухом, защищенном от света месте, при температуре от +2 до 25 ºС.
Срок годности – 4 года с даты производства. По истечению срока годности, указанного на этикетке, использованию не подлежит.
Зарегистрировано в Росздравнадзор

Источник: http://art-medika.com/catalog/mikrobiologia/medium/product-4753.html

Современный подход к дистрибьюции медицинских изделий

Питательная среда для определения токсигенности дифтерийных микробов, сухая.

Характеристика Коринетоксагар Оболенск:

Питательная среда Коринетоксагар Оболенск предназначена для определения токсигенности дифтерийных микробов. Представляет собой мелкодисперсный гигроскопичный порошок светло-желтого цвета.

ТУ 9398-026-78095326-2007. РУ № ФСР 2007/00370.

Панкреатический гидролизат минтая, натрия хлорид, натрия карбонат, агар.

Приготовление:

Препарат в количестве, необходимом дпя приготовления конкретной серии питательной среды, размешивают в 1 л дистиллированной воды, кипятят 3 мин до полного расплавления агара. Среду разливают в стерильные флаконы мерно, стерилизуют автоклавированием при температуре 110 °С в течение 30 мин. После автоклавирования и охлаждения до 45-50 o С добавляют 20 % сыворотки крови крупного рогатого скота или сыворотки лошадиной нормальной, перемешивают и разливают в стерильные чашки Петри.

Готовая среда в чашках Петри прозрачная, желтого цвета.

До внесения сыворотки среду можно использовать в течение 14 суток при температуре хранения 2-8 o C . Среду с сывороткой можно использовать в течение 5 суток при температуре хранения 2-8 o С.

Принцип действия:

Совокупность компонентов, входящих в состав среды, обеспечивает питательные потребности для роста всех видов коринебактерий и продуцирование токсина токсигенными штаммами.

В основе метода определения токсигенности коринебактерий дифтерии лежит процесс встречной иммунодиффузии токсина и антитоксических антител в плотной питательной среде. В местах оптимального количественного соотношения между токсином, продуцируемом коринебактериями и антитоксином, нанесенным на фильтровальную бумагу, происходит их взаимодействие с образованием преципитата в виде белой линии или «усов».

Проведение анализа:

Исследования образцов проводятся в соответствии с МУ 4.2.2698-98 «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции».

Инкубируют при температуре (37+1) o С в течение 24-48 ч.

Источник: http://shop.labprep.ru/product/%D0%BA%D0%BE%D1%80%D0%B8%D0%BD%D0%B5%D1%82%D0%BE%D0%BA%D1%81%D0%B0%D0%B3%D0%B0%D1%80-%D0%BE%D0%B1%D0%BE%D0%BB%D0%B5%D0%BD%D1%81%D0%BA/

В основе метода определения токсигенности коринебактерий дифтерии (тест Элека) лежит процесс встречной иммунодиффузии токсина и антитоксических антител в плотной питательной среде. В местах оптимального количественного соотношения между токсином, продуцируемым коринебактериями, и антитоксином, нанесенным на фильтровальную бумагу, происходит их взаимодействие с образованием преципитата в виде белой линии или «усов».

Токсигенность коринебактерий дифтерии определяют, как правило, в чистой культуре (отдельные колонии или культура со скошенного агара, или с пробы Пизу). Смесь колоний или культуры, загрязненные посторонней микрофлорой, также могут быть испытаны на токсигенность. При отсутствии, в этом случае, преципитатов в агаровом геле, опыт следует повторить с выделенными чистыми культурами.

Культуру засевают в виде «бляшек» диаметром 0,6-0,7 см на расстоянии 0,7-0,8 см друг от друга и 0,5 см от края полоски фильтровальной бумаги. На одну чашку следует засевать не более 10 «бляшек». Из них 6 «бляшек» испытуемой культуры, 4-контрольного штамма. При небольшом количестве испытуемого материала засевают 6 контрольных «бляшек» и 4 — испытуемых. Чашки с посевом помещают в термостат при 37 град. C.

Результат учитывают через 18-24 часа и 48 часов роста. Следует иметь в виду, что препарат антитоксической противодифтерийной сыворотки, помимо антител к дифтерийному антитоксину, содержит антитела к антигенам микробной клетки. Поэтому при постановке пробы на токсигенность с использованием данного препарата преципитаты могут образовываться не только в результате связывания токсина с антитоксином (специфические преципитаты), но и при взаимодействии антибактериальных антител с компонентами клетки коринебактерий дифтерии (неспецифические преципитаты). Последние могут формироваться как у токсигенных, в том числе и у контрольного штамма, так и у нетоксигенных коринебактерий дифтерии. Иногда отмечается появление множественных линий преципитации. Неспецифические преципитаты, как правило, слабо выражены, имеют нечеткие контуры, появляются чаще через 48-72 часа, в редких случаях могут появляться и на первые сутки. Критерием оценки специфичности преципитатов является слияние линий преципитации испытуемого штамма со специфическими линиями контрольного токсигенного штамма. В тех случаях, когда у контрольного штамма формируется несколько линий преципитации, специфическими следует считать более четкие и рано появляющиеся преципитаты. Поэтому просмотр чашек с пробой на токсигенность осуществляют через 18-24 часа от момента ее постановки. Если в течение данного времени у контрольного штамма линии преципитации не обнаруживаются, это свидетельствует о нарушении условий постановки реакции.

ЧИТАЙТЕ ТАКЖЕ:  профилактика дифтерии приказ

Варианты оценки результатов реакции:

1. Испытуемые культуры коринебактерий дифтерии являются токсигенными, если образуемые ими линии преципитации сливаются или имеют тенденцию к слиянию с соответствующими специфическими линиями контрольного токсигенного штамма.

2. Испытуемые культуры коринебактерий дифтерии являются нетоксигенными, если:

а) линии преципитации, образуемые испытуемой культурой, отсутствуют, при наличии специфических линий преципитации у контрольного штамма;

б) линии преципитации не могут слиться со специфическими линиями преципитации контрольного штамма, а скрещиваются или имеют тенденцию к скрещиванию с ними (неидентичные, неспецифические линии);

в) линии преципитации испытуемой культуры сливаются с неспецифическими линиями контрольного штамма;

г) линии преципитации испытуемой культуры перекрещиваются со специфическими линиями и сливаются с неспецифическими линиями контрольного штамма.

Очищенный ферментолизом и специфической сорбцией антитоксин не содержит антител к компонентам микробной клетки. При использовании этого препарата неспецифические линии преципитации не образуются.

Источник: http://vuzlit.ru/918146/opredelenie_toksigennyh_svoystv_korinebakteriy_difterii_pomoschyu_reaktsii_pretsipitatsii_gele

C. diphtheriae — палочковидные бактерии; вызывают дифтерию (греч. diphtheria — кожа, пленка) — острую инфекцию, характеризующуюся фибринозным воспалением в зеве, гортани, реже в других органах, и явлениями интоксикации.

Морфологические и культуральные свойства.

Corinebacterium diphteriae – тонкие, слегка изогнутые или прямые грамположительные палочки, расположенные под углом друг к другу в виде римских пятерок. Они утолщены на концах за счет наличия зерен валютина на одном или обоих полюсах клетки. Зерна валютина состоят из полифосфатов, они воспринимают анилиновые красители более интенсивно, чем цитоплазма клетки и легко выявляются при окраске по Нейссеру в виде гранул сине-черного цвета, тогда как тела бактерий – окрашивается в желто-зеленый. При окраске по Граму зерна валютина не выявляются.

Рисунок мазка из чистой культуры. Окраска по Нейссеру Мазок из чистой культуры.

Окраска щелочной синькой Леффлера

Дифтерийная палочка не обладает кислотоустойчивостью, неподвижна, спор не образует, имеет микрокапсулу с входящим в ее состав корд-фактором. В состав клеточной стенки входят галактоза, манноза, арабиноза, а также большое количество липидов, в том числе некислотоустойчивые миколовые кислоты.

Возбудитель дифтерии – факультативный анаэроб, гетеротроф, растет при 37 о С на сложных питательных средах: свернутая кровяная сыворотка, кровяной теллуритовый агар.

На элективных средах через 8-14 часов образует точечные, выпуклые желтовато-кремовые колонии с гладкой или слегка зернистой поверхностью. Колонии не сливаются и имеют вид шагреневой кожи.

На теллуритовых средах возбудитель дифтерии через 24-48 час образует черные или черно-серые колонии в результате восстановления теллурита до металлического теллура.

Возбудитель дифтерии обладает высокой ферментативной активностью. Дифференциально-диагностическими признаками C. diphteriae являются:

отсутствие способности ферментировать сахарозу и разлагать мочевину,

способность продуцировать фермент цистиназу.

Возбудитель дифтерии не однороден по культуральным и биохимическим свойствам. В соответствии с рекомендациями Европейского регионального бюро ВОЗ вид C. diphteriae подразделяют на 4 биовара: gravis, mitis, intermedius, belfanti.

На теллуритовой среде биовар gravis образует сухие, матовые, крупные, плоские, серовато-черные колонии, приподнятые в центре. Периферия колонии светлая с радиальной исчерченностью и неровным краем. Такие колонии напоминают цветок маргаритку. Биовар mitis образует мелкие, гладкие, блестящие, черные, выпуклые колонии с ровным краем, окруженные зоной гемолиза. Биовары intermedius и belfanti фактически относятся к биовару mitis, так как не разлагают крахмал, а этот признак у C. diphteriae является наиболее стабильным.

Антигенная структура. C. diphteriae имеют О-антиген (липидные и полисахаридные фракции, расположенные в глубине клеточной стенки) и К-антиген (поверхностный термолабильный белок). О-антиген является межвидовым. На основании К-антигена различают около 58 сероваров.

Факторы патогенности. Основными факторами патогенности C. diphteriae являются поверхностные структуры, ферменты и токсины.

Поверхностные структуры (пили, компоненты микрокапсулы: корд-фактор, К-антиген, миколовые кислоты) имеют белковую и липидную природу, способствуют адгезии микробов в месте входных ворот, препятствуют фагоцитозу бактерий, оказывают токсическое воздействие на клетки макроорганизма, разрушают митохондрии.

Ферменты патогенности: нейраминидаза, гиалуронидаза, гемолизин, дермонекротоксин. Нейраминидаза отщепляет N-ацетилнейраминовую кислоту от гликопротеидов слизи и поверхности клеток, лиаза расщепляет ее на пируват и N-ацетилманнозамин, а пируват стимулирует рост бактерий. В результате действия гиалуронидазы повышается проницаемость кровеносных сосудов и выход плазмы за их пределы, что ведет к отеку окружающих тканей. Дермонекротоксин вызывает некроз клеток в месте локализации возбудителя. Вышедший за пределы сосудов фибриноген плазмы контактирует с тромбокиназой некротизированных клеток организма и превращается в фибрин, что и является сущностью дифтерийного воспаления. Внутри дифтерийной пленки C. diphteriae находят защиту от эффекторов иммунной системы и антибиотиков, размножаясь, они образуют в большом количестве основной фактор патогенности — дифтерийный гистотоксин.

Дифтерийный гистотоксин оказывает блокирующее действие на синтез белка в органах, наиболее интенсивно снабженных кровью: сердечно-сосудистая система, миокард, нервная система, почки и надпочечники.

Эпидемиология. В естественных условиях дифтерией болеет только человек, не обладающий устойчивостью к возбудителю и антитоксическим иммунитетом. Заболевание распространено повсеместно. Наибольшее количество больных наблюдается во второй половине сентября, октябре и ноябре. Наиболее восприимчивы дети дошкольного и младшего школьного возраста. Среди взрослых к группе повышенного риска относятся работники общественного питания и торговли, школ, детских дошкольных и медицинских учреждений.

ЧИТАЙТЕ ТАКЖЕ:  прививка от дифтерии в уфе

C. diphteriae обладает устойчивостью к факторам окружающей среды: в капельках слюны, прилипших к посуде или игрушкам, на ручках дверей они могут сохраняться до 15 дней, на предметах окружающей среды – 5,5 мес., могут размножаться в молоке. При кипячении C. diphteriae погибают в течение 1 мин, в 10% растворе перекиси водорода – через 3 мин, в 5% растворе карболовой кислоты и 50-60% спирте – через 1 мин.

Дифтерийный гистотоксин очень неустойчив и быстро разрушается при действии света, нагревании, окислении.

Источником инфекции являются:

1.носители токсигенных штаммов — особенно опасны те носители, у которых нет клинических проявлений заболевания, так как они обладают антитоксическим иммунитетом.

2.больные: Среди больных наибольшее значение имеют лица с локализацией процесса в верхних дыхательных путях. Больной эпидемиологически опасен в течение всего периода болезни, даже в период выздоровления он выделяет токсигенные штаммы в окружающую среду.

Основным механизмом заражения является аэрозольный. Пути передачи:

ведущая роль принадлежит воздушно-капельному,

иногда могут осуществляться воздушно-пылевой, контактно-бытовой, а также алиментарный (через молоко) пути передачи.

Входными воротами инфекции служат слизистые оболочки ротоглотки (небные миндалины и окружающие их ткани), носа, гортани, трахеи, а также слизистые оболочки глаз и половых органов, поврежденные кожные покровы, раневая или ожоговая поверхность, незажившая пупочная ранка.

Наиболее часто встречается дифтерия зева (90-95%). Инкубационный период длится от 2 до 10 дней. По патогенезу дифтерия относится к токсинемическим инфекциям, когда микроб остается в месте входных ворот инфекции, а все клинические проявления связаны с действием экзотоксина.

Начальным этапом инфекционного процесса является адгезия микроба в месте входных ворот. Размножаясь там, микроб выделяет гистотоксин, который оказывает местное действие на клетки тканей, а также поступает в кровь, что ведет к возникновению токсинемии.

В области входных ворот развивается воспалительная реакция, которая сопровождается некрозом эпителиальных клеток и отеком, образуется налет белого цвета с сероватым или желтоватым оттенком, содержащим большое количество микробов, продуцирующих токсин.

Характерным признаком дифтерии является фибринозная пленка:

Если слизистая оболочка образована однослойным эпителием (гортань, трахея, бронхи), возникает крупозное воспаление, здесь пленка располагается поверхностно и легко отделяется от подлежащих тканей.

Если слизистая оболочка образована многослойным эпителием (ротоглотка, надгортанник, голосовые связки), возникает дифтерическое воспаление, когда все клетки прочно связаны между собой и с подлежащей соединительнотканной основой. Фибринозная пленка в этом случае плотно спаяна с подлежащими тканями и не снимается тампоном. При попытке сделать это слизистая оболочка кровоточит.

Иммунитет. После перенесенного заболевания формируется стойкий и напряженный гуморальный антитоксический иммунитет. Продолжительность поствакцинального иммунитета – 3-5 лет.

Материалом для исследования является фибринозная пленка, слизь из зева или носа.

Сбор материала необходимо проводить в течение 3-4 ч (не позднее 12 ч) с момента обращения больного. Для взятия материала используют сухие ватные тампоны, если посев будет произведен в течение 2-3 ч, при транспортировке материала тампоны смачивают 5% раствором глицерина.

Основным методом диагностики является бактериологический. Бактериологическая лаборатория через 48 ч должна дать ответ о наличии или отсутствии C. diphteriae в анализах.

Материал засевают на питательную среду. Отбирают подозрительные колонии и выделенную культуру идентифицируют:

По наличию цистиназы (проба Пизу): в столбик питательного агара с цистином уколом засевают исследуемую культуру. Посевы инкубируют при 37 о С 24 ч. C. diphteriae вызывает почернение среды по ходу укола в результате образования сульфида свинца.

По наличию уреазы (проба Закса): готовят спиртовый раствор мочевины и раствор индикатора – фенолового красного, которые перед употреблением смешивают в соотношении 1:9 и разливают в агглютинационные пробирки. Исследуемые бактерии вносят петлей и растирают по стенке прибирки. В положительном случае через 20-30 мин инкубации при 37 о С среда приобретает красный цвет в результате расщепления мочевины уреазой.

Способности C. diphteriae продуцировать токсин (устанавливается в реакции преципитации в агаре). Для этого в чашку Петри с питательным агаром, содержащим 15-20% лошадиной сыворотки, 0,3% мальтозы и 0,03% цистина помещают полоску фильтровальной бумаги, пропитанную антитоксической противодифтерийной сывороткой, содержащей 5000 АЕ/мл. Чашку подсушивают при 37 0 С 30 мин и бляшками засевают испытуемые штаммы на расстоянии 0,6-0,8 см от края бумаги. Посевы инкубируют при 37 0 С 24 ч. В положительном случае в месте соединения токсина с антитоксином в среде образуется преципитат в виде белых линий – «усиков».

Для определения токсигенности возбудителя дифтерии может быть использована биопроба. Морской свинке внутрикожно или подкожно вводят испытуемую культуру. Токсигенные культуры убивают животных в течение 3-5 суток, при вскрытии обнаруживаются гиперемированные надпочечники, а при внутрикожном заражении – некроз кожи.

Для бактериоскопического исследования (как самостоятельный диагностический метод применяется редко ввиду полиморфизма возбудителя, но может быть проведен по просьбе врача) из материала готовят мазки на нескольких стеклах, один мазок окрашивают по Граму, другой по Нейссеру, третий – обрабатывают флюорохромом – корифосфином для люминесцентной микроскопии.

ЧИТАЙТЕ ТАКЖЕ:  плохое самочувствие после прививки от дифтерии

О наличии антитоксического иммунитета судят по реакции Шика – реакции нейтрализации токсина антитоксином. В кожу предплечья вводят 1/40 DLM дифтерийного токсина. Покраснение и припухлость в месте введения свидетельствует об отсутствии антитоксинов в крови. Отрицательная реакция Шика говорит о наличии антитоксинов.

Для ускоренного обнаружения дифтерийного токсина, как в бактериальных культурах, так и в сыворотке крови, применяют: РНГА с антительным эритроцитарным диагностикумом, РИА и ИФА. Из молекулярно-генетических методов исследования применяют ПЦР.

Препараты для специфического лечения дифтерии.

В целях нейтрализации дифтерийного гистотоксина применяют специфическую противодифтерийную лошадиную очищенную концентрированную сыворотку, которую получают путем гипериммунизации лошадей дифтерийным антитоксином.

Специфическое лечение противодифтерийной сывороткой начинают немедленно при клиническом подозрении на дифтерию. Необходимо выбрать оптимальный режим введения сыворотки, так как антитоксин может нейтрализовать только не связанный с тканями токсин. Для профилактики развития анафилактического шока сыворотку вводят дробно по А.М. Безредке. Введение сыворотки позднее 3-го дня болезни нецелесообразно.

Разработан противодифтерийный иммуноглобулин человека для внутривенного введения. Его применение дает меньше побочных реакций.

Для подавления размножения C. diphteriae в месте входных ворот обязательно назначают антибиотики. Препаратами выбора являются пенициллин или эритромицин, либо другие β-лактамы и макролиды.

Препараты для специфической профилактики дифтерии.

Для создания искусственного активного антитоксического иммунитета применяют дифтерийный анатоксин. Очищенный и концентрированный препарат входит в состав ассоциированных вакцин:

1. адсорбированной коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакцины (АКДС-вакцина),

2. адсорбированного дифтерийно-столбнячного анатоксина (АДС-анатоксин),

3. адсорбированного дифтерийно-столбнячного анатоксина с уменьшенным содержанием антигенов (АДС-М),

4. адсорбированного дифтерийного анатоксина с уменьшенным содержанием антигена (АД-М).

Базисный иммунитет создается у детей согласно календарю прививок. Только 95% охват населения прививками гарантирует эффективность вакцинации.

Источник: http://studfiles.net/preview/1624785/page:30/

HiMedia : инструкция по применению продукции

По всем вопросам обращаться: Почтовый адрес: 124498, Москва, а/я 130.

Офис: 123007, Москва, Хорошевское шоссе, д. 13 а, кор.3.

Тел / Факс : +7 (495) 940 33 12, 940 33 13, 940 33 14,940 33 96, 940 33 97, 940 33 98.

Diphteria Virulence Agar Base

Основа агара для определения токсигенности дифтерийных микроорганизмов

Продукция зарегистрирована в Министерстве здравоохранения Российской Федерации (ФСЗ 2009/03709).

С питательной и селективной добавками используется для определения токсигенности Corynebacterium diphtheriae.

Конечное значение рН при 25 о С

** Состав выверен и доведен до соответствия необходимых параметров.

Суспендируйте 37,5 г порошка в 1 000 мл дистиллированной воды. Нагрейте до кипения для растворения компонентов среды полностью. Стерилизуйте автоклавированием при 1,1атм. (121°C) в течение 15 минут. Охладите до 55-60°C. Асептически внесите 2 мл добавки KL Virulence Enrichment (FD072) и 0,5 мл стерильного 1%-го теллурита калия (FD052) в 100 мм чашку Петри и затем быстро добавьте 10 мл стерильной Основы Агара для определения вирулентности Corynebacterium diphtheriae. Прежде чем питательная среда затвердеет, поместите полосу фильтровальной бумаги, насыщенную дифтерийным антитоксином по диаметру чашки. Позвольте полоске погрузиться ко дну чашки. Засейте чашку обильным инокулятом поперек полоски.

Принцип и оценка результата:

Corynebacterium diptheriae — принципиально важный инфекционный агент человека, патогенность которого обусловлена продуцированием мощного экзотоксина, активно воздействующего на множество тканей, включая сердечную мышцу и периферические нервы (1). Токсин, диффундирующий от предполагаемой культуры Corynebacterium diphtheriae, посеяной штрихом, визуализируется формированием белой линии преципитата, в том месте, где токсин встречается с антитоксином дифтерии, диффундирующим от полоски фильтровальной бумаги, залитой в агар. Токсигенность In vitro (вирулентность) Corynebacterium diphtheriae была впервые описана Elek (2). Метод Eleks был далее улучшен King, Frobisher и Parsons (3) при помощи стандартизированной питательной среды.Эта питательная среда дала результаты, сопоставимые с инокуляционной пробой на животных.

Также было найдено, что протеозный пептон поддерживает токсинообразование в дополнение к повторяемости результатов.

Hermann и др. (4) разработали бессывороточное обогащение среды для культуры Corynebacterium diphtheriae чтобы преодолеть слабую повторяемость, с которой сталкиваются при использовании для обогащения сыворотку лошади, овцы или кролика.

Эта бессывороточная обогатительная добавка состоит из кислотного гидролизата казеина, твина 80 и глицерина (5). В процессе инкубации токсинообразующих штаммов появляется линия преципитации.

Протеозный пептон обеспечивает азот и углерод, требуемые для хорошего роста большого разнообразия микроорганизмов, а также для токсинообразования. Хлорид натрия поддерживает осмотическое давление питательной среды. Агар включен как отверждающий агент. Теллурит калия ингибирует большинство грамотрицательных бактерий кроме Corynebacterium, Streptococcus mitis, Streptococcus salivarius и Enterococci.

Staphylococcus epidermidis может показать рост. Возможны также ложноположительные результаты. Поэтому необходимо всегда проводить параллельно позитивный контроль (6).

Corynebacterium ulcerans и Corynebacterium pseudotuberculosis могут также образовывать линию преципитации (7).

Внешний вид порошка:

Кремово-желтый гомогенный сыпучий порошок

Консистенция готовой среды:

Образуется среда, соответствующая по плотности 1,5%-ному агаровому гелю.

Цвет и прозрачность готовой среды:

В чашках Петри формируется янтарного цвета гель, прозрачный, с легкой опалесценцией.

При 25°C водный раствор (3,75% вес/об) имеет рН7.8±0.2

pH готовой среды: 7.60-8.00

Культуральные свойства референс-штаммов при 35-37°C через 24-72 часа при добавлении

Питательной Добавки для определения токсигенности дифтерийных бактерий KL ( FD 072) и

0,5 мл 1%-го раствора Теллурита калия (FD052).

Источник: http://www.himedialabs.ru/m882r

Ссылка на основную публикацию